本书将生物化学实验和分子生物学实验融为一体，前5章按照实验技术自身的体系，简明通俗、图文并茂地讲述了生物化学与分子生物学实验技术理论，既可由教师讲授，也可由学生自学。同时将53个难度不等的基础实验按技术类别分列于5章中，可供不同条件的学校选做。第六章介绍了开设综合性实验和设计性实验的目标和方法，编入3个难度适中的综合性实验。
样章试读
目录
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第三版前言
第二版前言
第一版前言
第一章 定量分析技术 1
第一节 滴定分析法 1
一、基本原理 1
二、标准溶液 3
三、滴定分析的计算 4
四、减小滴定误差的方法 6
第二节 紫外可见分光光度法 7
一、基本原理 7
二、分光光度计的主要部件 8
三、分光光度法的定性和定量 9
四、减小测定误差的方法 10
第三节 荧光分析法 11
一、基本原理 11
二、荧光仪的主要部件 12
三、荧光分析法的定性和定量 12
四、减小测量误差的方法 14
第四节 酶活力及动力学数据的测定 14
一、酶活力的测定 15
二、Km和Vmax的测定 17
三、其他动力学数据的测定 17
实验1-1 粗脂肪的提取和定量测定 18
实验1-2 碘价的测定(Hanus法) 19
实验1-3 皂化价的测定 20
实验1-4 酸价的测定 21
实验1-5 蛋白质的测定(凯氏定氮法) 21
实验1-6 2,6-二氯酚靛酚法测定维生素C的含量 23
实验1-7 碘量法测定维生素C的含量 24
实验1-8 血糖定量测定(GODGPAP法) 25
实验1-9 蒽酮比色定糖法 26
实验1-10 3,5-二硝基水杨酸法测定还原糖含量 26
实验1-11 血清胆固醇的定量测定(磷硫铁法) 27
实验1-12 血清总胆固醇的测定(邻苯二甲醛法) 28
实验1-13 双缩脲法测定蛋白质含量 29
实验1-14 Folin试剂法(Lowry法)测定蛋白质含量 29
实验1-15 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质含量 30
实验1-16 紫外吸收法测定蛋白质含量 31
实验1-17 紫外吸收法测定核酸含量 32
实验1-18 二苯胺显色法测定DNA含量 33
实验1-19 地衣酚显色法测定RNA含量 34
实验1-20 荧光法测定维生素B2含量 34
实验1-21 血清丙氨酸氨基移换酶(ALT)的测定 35
实验1-22 酸性磷酸酯酶的测定 37
第二章 提取、沉淀和离心分离技术 38
第一节 提取技术 38
一、材料的选择与处理 38
二、细胞的破碎 39
三、抽提 40
第二节 沉淀分离技术 42
一、蛋白质的沉淀分离 42
二、核酸的提取与沉淀分离 45
三、多糖的提取和分离 46
四、小分子活性成分的提取和分离 48
第三节 膜分离技术 56
一、膜分离技术的分类 56
二、膜的分类 57
三、膜的使用寿命 57
四、透析 58
五、微滤、超滤和反渗透 59
第四节 提取物的浓缩、结晶和干燥 60
一、浓缩 60
二、结晶 62
三、干燥 63
第五节 离心分离技术 64
一、离心机的种类与用途 64
二、离心分离方法的选择 65
三、离心条件的确定 66
四、离心操作的注意事项 68
实验2-1 香菇多糖的制备 68
实验2-2 卵磷脂的制备 69
实验2-3 大蒜SOD的提取与分离 71
实验2-4 菜花(花椰菜)中核酸的分离和鉴定 72
实验2-5 酵母RNA的提取与分离 73
实验2-6 从肝脏中提取DNA 74
第三章 层析技术 76
第一节 吸附层析 76
一、吸附柱层析 77
二、大孔吸附树脂和聚酰胺柱层析 80
三、聚酰胺薄膜层析 81
第二节 分配层析 82
一、概述 82
二、纸层析 83
第三节 凝胶层析 86
一、基本原理 86
二、凝胶的选择 87
三、操作 88
第四节 离子交换层析 89
一、基本原理 89
二、离子交换剂 90
三、操作 93
第五节 亲和层析 95
一、配基与偶联凝胶的选择与处理 95
二、亲和层析的操作条件 96
第六节 薄层层析 96
一、支持剂的选择与处理 97
二、薄层板的制作 97
三、层析方法 98
第七节 气相色谱 99
一、基本原理 99
二、气相色谱的气路系统 100
三、色谱柱 100
四、检测器 102
五、定性和定量方法 102
第八节 高效液相色谱 103
一、概述 103
二、HPLC的特点 103
三、HPLC的分类 104
四、HPLC的仪器构成 105
五、定性定量方法 106
实验3-1 氨基酸的纸层析 107
实验3-2 微晶纤维素薄板层析法分离氨基酸 108
实验3-3 核苷酸的离子交换层析 109
实验3-4 DNS-氨基酸的聚酰胺薄膜层析 110
实验3-5 凝胶层析测定蛋白质的Mr 111
实验3-6 胰蛋白酶的亲和层析 112
实验3-7 HPLC法测定生物类黄酮含量 113
实验3-8 HPLC法测定维生素A含量 114
第四章 电泳技术 115
第一节 基本原理 115
一、泳动度 115
二、影响泳动度的因素 116
第二节 乙酸纤维素薄膜电泳 117
第三节 琼脂糖凝胶电泳 118
一、琼脂糖凝胶的特点 118
二、DNA的琼脂糖凝胶电泳 119
三、印迹转移电泳 120
四、交变脉冲电场凝胶电泳 120
第四节 聚丙烯酰胺凝胶电泳 121
一、聚丙烯酰胺凝胶的特点 121
二、凝胶聚合的原理及有关特性 122
三、PAGE原理 124
四、SDS-PAGE原理 125
五、聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳原理 126
六、聚丙烯酰胺凝胶双向电泳原理 129
第五节 高效毛细管电泳 130
一、基本原理 130
二、实验方法 131
三、分离类型及应用 132
第六节 免疫分析技术 133
一、抗体的性质和制备 133
二、抗原抗体反应 137
实验4-1 血清蛋白的乙酸纤维素薄膜电泳 141
实验4-2 垂直板PAGE分离血清蛋白 143
实验4-3 SDS-PAGE测定蛋白质的相对分子质量 144
实验4-4 等电聚焦电泳测定血清蛋白质等电点 145
实验4-5 DNA的琼脂糖凝胶电泳 147
实验4-6 PAGE分离RNA 148
实验4-7 对流免疫电泳法测定胎儿甲种球蛋白 149
实验4-8 火箭免疫电泳法测定抗原含量 150
第五章 分子生物学基本技术 151
第一节 DNA的体外合成 151
一、DNA的化学合成 151
二、聚合酶链反应技术 152
第二节 核酸的分子杂交 156
一、探针的种类与选择 156
二、标记物的选择 157
三、探针的放射性同位素标记 158
四、探针的非放射性标记 158
五、膜上印迹杂交的条件选择 159
六、杂交信号的检测 161
七、DNA芯片技术及应用 162
第三节 基因克隆 163
一、目的基因的来源 163
二、常用的克隆载体 164
三、DNA分子的体外连接 166
四、重组子导入受体细胞 167
五、重组子的筛选 167
六、基因组文库的构建 169
七、cDNA文库的构建 170
第四节 基因表达 172
一、原核生物的表达载体 173
二、用于原核细胞表达的外源基因 174
三、提高表达水平的措施 174
四、外源基因在酵母细胞中的表达 177
五、外源基因在昆虫杆状病毒中的表达 178
六、外源基因在哺乳动物细胞中的表达 179
第五节 转基因植物和转基因动物 182
一、转基因植物 182
二、转基因动物 183
第六节 核酸的序列测定 185
一、链终止法 186
二、新一代高通量测序技术 186
实验5-1 植物基因组DNA的提取 188
实验5-2 动物基因组DNA的提取 190
实验5-3 细菌基因组DNA的提取 191
实验5-4 质粒DNA的提取 192
实验5-5 聚合酶链式反应(PCR) 194
实验5-6 质粒DNA的酶切及电泳鉴定 195
实验5-7 DNA重组 196
实验5-8 大肠杆菌的转化 196
实验5-9 外源基因在大肠杆菌中的诱导表达 197
第六章 综合性实验和设计性实验 198
实验6-1 超氧化物歧化酶的分离纯化和同工酶分析 199
实验6-2 蛋白质印迹分析 203
实验6-3 蛋白质的双向凝胶电泳 205
附录一 实验数据的处理 206
附录二 调整硫酸铵溶液饱和度计算表(25℃) 211
附录三 常见生化物质电泳后的染色方法 212
附录四 常用缓冲液的配制 215
参考书目 220
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